3.3.1. ВАКЦИНОПРОФИЛАКТИКА. ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К ВАКЦИННЫМ ШТАММАМ СИБИРЕЯЗВЕННОГО МИКРОБА ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ЛЮДЕЙ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ. Методика. Главный государственный санитарный врач РФ. 26.02.02 МУ 3.3.1.1112-02

Фрагмент документа "3.3.1. ВАКЦИНОПРОФИЛАКТИКА. ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К ВАКЦИННЫМ ШТАММАМ СИБИРЕЯЗВЕННОГО МИКРОБА ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ЛЮДЕЙ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ".

Предыдущий фрагмент <<< ...  Оглавление  ... >>> Следующий фрагмент

Полный текст документа

4. Характеристика штамма по видовым признакам

     Возбудителями   сибирской   язвы   являются  микроорганизмы  рода
Bacillus,   вида   anthracis.   В.  anthracis  -  облигатный  паразит,
хемоорганотроф,  метаболизм факультативно аэробный, грамположительные,
неподвижные палочки, образуют термоустойчивые эндоспоры.
     4.1. Испытуемый   сибиреязвенный   штамм   при  посеве  в  бульон
Хоттингера <*>,  при  рН  7,2  -  7,3  после  суточной  инкубации  при
температуре  35  -  37  град.С  должен давать типичный для возбудителя
сибирской язвы рост культуры у  дна  пробирки  в  виде  "комка  ваты",
относительно   трудно   разбивающегося   при   встряхивании;  в  толще
прозрачного бульона возможно  наличие  хлопьев  растущей  культуры.  В
мазках   из   суточных  бульонных  культур,  окрашенных  по  Граму,  -
морфологически    типичные    для    возбудителя    сибирской     язвы
грамположительные палочки длиной 3 - 10 мкм и цепочки из этих палочек.
В висячей капле - отсутствие подвижности бацилл.
     4.2. При  посевах  на чашки Петри с питательным агаром Хоттингера
<*> после  суточной  инкубации  при  температуре  (36  +/-  1)  град.С
культура   штамма  должна  вырастать  в  виде  сухих,  с  "шагреневой"
поверхностью колоний,  с  неровными  краями,  характерных  для  R  или
RО-формы,     не     должно     быть     гладких    S-форм    колоний.
--------------------------------
     <*> Бульон и агар Хоттингера готовят по МУК 4.1/4.2.588-96.

     В    мазках    из    агаровых   культур   должны   обнаруживаться
грамположительные   бациллы,  обычно  группирующиеся  более  короткими
цепочками, чем в мазках из бульонных культур.
     4.3.  При  посеве  испытуемого  сибиреязвенного  штамма  на  агар
Хоттингера в чашках Петри с добавлением 5%-ной дефибринированной крови
кролика  или барана не должно наблюдаться гемолиза. При посеве 1 капли
(0,05    мл)    взвеси,    содержащей    100   -   200   тысяч   спор,
неантибиотикорезистентного  штамма  в пробирки с питательным бульоном,
разлитым  по  5 - 7 мл и содержащим 1000 ед./мл пенициллина, не должно
быть роста культуры испытуемого сибиреязвенного штамма через 20 - 24 ч
инкубации при температуре (36 +/- 1) град.С.
     4.4. При      посеве      3-часовой      бульонной       культуры
неантибиотикорезистентных  сибиреязвенных штаммов на агар Хоттингера в
чашках Петри с добавлением к среде 0,5 и 0,05 ед./мл пенициллина через
2,5  -  3  ч  инкубирования  при  температуре (36 +/- 1) град.С должен
проявляться  рост   культуры,   наблюдаемый   при   фазово-контрастной
микроскопии в виде шаров,  соединенных в цепочки - "феномен ожерелья".
Необходим контрольный посев изучаемой 3-часовой бульонной культуры  на
тот же агар без добавления пенициллина;  рост должен быть типичным для
возбудителя сибирской язвы.
     4.5.  На  плотной  питательной  среде  Гладстона - Фильда (состав
среды  приведен  в  п. 1 Прилож. 1) или на питательной среде на основе
ферментативного гидролизата  мяса  или рыбокостной муки,  принятой для
изготовления живой споровой  вакцины  (РП  N  831-98),  через  4  сут.
инкубации при температуре 33 - 35 град.С в мазках из выросшей культуры
должно быть не менее 90%  типичных сибиреязвенных спор по отношению  к
общему  числу  бацилл.  Мазки окрашивают по методу Циля - Нильсена или
Ребигера <*>.  Методика определения концентрации спор приведена в п. 2
Прилож. 1.
--------------------------------
     <*>  Методика  окрашивания  мазков  по Цилю - Нильсену и Ребигеру
приведена  в  Инструкции  и  методических  указаниях  по клинической и
лабораторной  диагностике,  лечению  и  профилактике  сибирской язвы у
людей (Саратов, 1970. С. 56 - 57).

     4.6.  В  испытуемой  культуре вакцинного штамма должно выявляться
методом  микрокультур  не  менее  90%  живых  спор, высевом - не менее
половины. Методика определения приведена в п. 2 Прилож. 1.
     4.7.   Оценка   генетической   и   фенотипической   полноценности
сибиреязвенных  штаммов  как  вакцинных  по  детерминантам  и факторам
иммуногенности и вирулентности.
     4.7.1. Определение присутствия плазмиды рХО1 в вакцинном штамме.
     Вакцинный  штамм должен содержать плазмиду рХО1 или клонированные
гены  ответственные  за  синтез  ПА.  Плазмида  рХО1 (110 МД) кодирует
синтез  сибиреязвенного  токсина,  состоящего  из  ПА  - протективного
антигена,  ЛФ - летального фактора, ОФ - отечного фактора. ПА является
основным  иммуногенным фактором. Методика определения приведена в п. 3
Прилож. 1.
     4.7.2.    Определение    отсутствия    у   штамма   капсулы   при
культивировании на питательных средах.
     В посевах  культур  испытуемого  штамма  на чашки Петри со средой
Шефера (сыворотка крови лошади,  свернутая при температуре 80 град.С в
течение  48  ч)  или  на 1%-ном бикарбонатном агаре (агар Хоттингера с
1%-ной  питьевой  содой)  после  инкубации  в  течение  2   сут.   при
температуре   37   град.С   в   анаэростате  должен  наблюдаться  рост
шероховатых  матовых  колоний,  сходных  с  R-колониями   на   обычных
питательных  средах;  в мазках из колоний должны обнаруживаться только
бациллы,  лишенные капсулы.  Должны полностью  отсутствовать  гладкие,
блестящие колонии, содержащие капсульные формы бацилл.
     В жидкой среде ГКИ (60%  раствора Хенкса с  40%  сыворотки  крови
крупного  рогатого скота,  инактивированной при 56 град.С 30 мин.,  рН
7,2  -  7,3)  должен  быть  рост  только  бескапсульных  палочек.  Для
выявления  капсулообразования  посевы,  закрытые  резиновыми пробками,
инкубируют 16 - 18 ч при  температуре  37  град.С.  Мазки  из  культур
фиксируют   метиловым   спиртом  с  10%-ным  формалином  и  окрашивают
раствором метиленового синего по Леффлеру.  Для контроля качества сред
и  условий  культивирования  таким  же образом следует провести посевы
капсулообразующего штамма 71/12 2-й вакцины Ценковского.
     4.7.3. Определение отсутствия у испытуемого штамма плазмиды рХО2,
кодирующей синтез капсулы, с использованием метода электрофореза ДНК в
агарозовом геле.
     Вакцинный  штамм  сибиреязвенного микроба не должен иметь в своем
геноме   плазмиды   рХО2,   кодирующей   синтез  капсулы.  Определение
отсутствия  у  штамма плазмиды рХО2 проводят по методике, изложенной в
п. 4.7.1, одновременно с определением плазмиды рХО1.
     На фотографии агарозного геля у испытуемого штамма и контрольного
вакцинного штамма СТИ-1 должна отсутствовать полоска,  соответствующая
по размеру ДНК плазмиде рХО2 (60 МД).  В качестве контроля  используют
                               +
штамм  В.  anthracis КМ 34 рХО2 ,  pХ01 или аналогичный несущий только
плазмиду капсулообразования и не содержащий в  своем  геноме  плазмиду
pX01 (ПО МД), ответственную за синтез сибиреязвенного токсина.
     4.7.4. Определение       наличия       pag-гена,      кодирующего
токсинообразование методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).
     Вакцинный штамм  сибиреязвенного микроба должен содержать pag-ген
плазмидной или иной локализации.
     Определение наличия pag-гена приведено в п. 4 Прилож. 1.
     4.8. Характеристика основных свойств эталонного вакцинного штамма
сибиреязвенного микроба СТИ-1.

                                                             Таблица 1

---------------------------------------------------------------------
| N |            Признаки          |         Характеристика         |
|п/п|                              |                                |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|1  | Морфология                   | палочки, споры                 |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|2  | Подвижность                  | отсутствует                    |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|3  | Окраска по Граму             | грамположительная              |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|4  | Рост на МПБ                  | "комок ваты" в прозрачном      |
|   |                              | бульоне                        |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|5  | Рост на плотных питательных  | R и RO-формы с типичными       |
|   | средах                       | "локонами", в виде "головы     |
|   |                              | медузы" или "львиной гривы"    |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|6  | Гемолиз на агаре Хоттингера  | отсутствует                    |
|   | с 5% дефибринированной крови |                                |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|7  | Рост на агаре Хоттингера с   | "феномен ожерелья"             |
|   | пенициллином                 |                                |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|8  | Наличие капсулы              | отсутствует                    |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|9  | Наличие плазмиды рХО1        | имеется                        |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|10 | Наличие pag-гена             | имеется                        |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|11 | Наличие плазмиды рХО2        | отсутствует                    |
|---|------------------------------|--------------------------------|
|12 | Наличие сар-гена             | отсутствует                    |
---------------------------------------------------------------------

Фрагмент документа "3.3.1. ВАКЦИНОПРОФИЛАКТИКА. ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К ВАКЦИННЫМ ШТАММАМ СИБИРЕЯЗВЕННОГО МИКРОБА ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ЛЮДЕЙ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ".

Предыдущий фрагмент <<< ...  Оглавление  ... >>> Следующий фрагмент

Полный текст документа