О НАДЗОРЕ ЗА ОБОРОТОМ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ, СОДЕРЖАЩИХ ГМО. Постановление. Главный государственный санитарный врач РФ. 30.11.07 80

Фрагмент документа "О НАДЗОРЕ ЗА ОБОРОТОМ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ, СОДЕРЖАЩИХ ГМО".

Предыдущий фрагмент <<< ...  Оглавление

Полный текст документа

IV. Молекулярно-генетический анализ
            пищевой продукции, полученной с использованием
           генно-инженерно-модифицированных микроорганизмов
             и микроорганизмов, имеющих генно-инженерно -
            модифицированные аналоги, методом полимеразной
               цепной реакции (ПЦР) в реальном времени

     4.1.  Для  выявления ГММ и МГМА в пищевых продуктах методом ПЦР в
реальном   времени   используют   следующие  материалы,  оборудование,
реактивы:
     1)  амплификатор  с оптической приставкой типа Rotor Gene - 3000,
ABI Prism 7000, iCycler IQ или отечественные аналоги;
     2)    компьютер,    совместимый    с   программным   обеспечением
амплификаторов с оптической приставкой;
     3) оптические 96-луночные планшеты типа MicroAmp;
     4) оптические крышки типа MicroAmp;
     5) оптически прозрачные адгезивные пленки;
     6) термостат, поддерживающий температуру +45 град.C, для пробирок
объемом 1,5 мл;
     7)  центрифуга со скоростью вращения ротора до 12000 об./мин. для
пробирок вместимостью 1,5 и 0,5 мл типа "эппендорф";
     8)   встряхиватель   вибрационный  типа  "вортекс"  со  скоростью
вращения до 3000 об./мин.;
     9) очки/маска защитные;
     10) холодильник бытовой электрический;
     11) морозильная камера,  обеспечивающая температуру (-20)  град.C
или ниже;
     12) гомогенизатор типа "SilentCrusher" или других моделей;
     13) ступка фарфоровая с пестиком;
     14) пинцет медицинский;
     15) ножницы медицинские;
     16) скальпель медицинский;
     17) весы лабораторные общего назначения 2-го класса точности;
     18) дистиллятор;
     19) анализатор потенциометрический;
     20) облучатель бактерицидный настенный;
     21) дозаторы с переменным объемом дозирования:
     0,2  - 2,0 мм3 с шагом 0,01 мм3, 0,5 - 10,0 мм3 с шагом 0,01 мм3,
2  - 20 мм3 с шагом 0,01 мм3, 20 - 200 мм3 с шагом 0,1 мм3, 100 - 1000
мм3 с шагом 1 мм3, 2 - 10 см3 с шагом 0,1 см3;
     22) пробирки типа "эппендорф" вместимостью 1,5 мл;
     23) пробирки типа "эппендорф" для ПЦР вместимостью 0,5 мл;
     24) наконечники полимерные объемом 1 - 200 мкл;
     25) наконечники полимерные объемом 200 - 1000 мкл;
     26) перчатки резиновые;
     27) колбы плоскодонные конические разной вместимости;
     28) цилиндры стеклянные мерные лабораторные вместимостью 25, 100,
1000 см3;
     29) воронки стеклянные;
     30) штативы для пробирок объемом 1,5 и 0,5 мл;
     31)  комплект  N  2 (модифицированный) реагентов для амплификации
ДНК  "Набор  для  выделения ДНК из ферментных препаратов, стартерных и
заквасочных культур, БАД к пище";
     32) реактивы:
     - тритон Х-100,
     - гуанидина гидрохлорид,
     - ЭДТА (этилендиаминтетрауксусная кислота),
     - додецилсульфат натрия,
     - суспензия двуокиси кремния,
     - фенол водонасыщенный,
     - хлороформ водонасыщенный,
     - спирт этиловый ректификованный,
     - ацетат аммония,
     - протеиназа K,
     - магния хлорид,
     - калия хлорид,
     - водный раствор дезоксинуклетидтрифосфатов (0,1 М),
     - креозоловый красный,
     - термостабильная ДНК-полимераза,
     - масло вазелиновое,
     - трис-ацетат,
     - ледяная уксусная кислота,
     - агароза для электрофореза,
     - бромистый этидий,
     - вода деионизированная.
     4.2.  Допускаются  к  использованию  оборудование,  инструменты и
материалы   аналогичного   назначения   других  типов,  разрешенные  к
применению    в    установленном   порядке   и   с   характеристиками,
обеспечивающими   проведение  исследований  в  соответствии  с  данным
документом.
     4.3.  Выделение  ДНК  ГММ  и  МГМА  из  заквасочных  и стартерных
культур, БАД, ферментных препаратов и пищевых продуктов осуществляют в
соответствии с п. п. 3.13 - 3.17 настоящих Методических указаний.
     4.4.   ПЦР  в  реальном  времени  осуществляют  с  использованием
модифицированного  комплекта N 2 реагентов для амплификации ДНК "Набор
реагентов    для    выявления    селективных    маркеров   генетически
модифицированных    микроорганизмов".    Модификация   предусматривает
использование   в   реакционной   смеси  не  только  праймеров,  но  и
флуоресцентно-меченых  зондов,  а  также использование контрольной ДНК
ГММ с известной концентрацией в нескольких десятикратных разведениях.
     4.5.     Флуоресцентно-меченые     зонды    представляют    собой
олигонуклеотиды,            комплементарные            амплифицируемой
последовательности-мишени,   содержащие   на   5`-конце   флуорофор  -
донорфлуоресцентного   излучения,   а   на  3`-конце  -  его  акцептор
(гаситель).
     Нарастание  флуоресцентного  свечения наблюдают после физического
разобщения  флуорофора  и  гасителя;  разобщение флуорофора и гасителя
происходит  при  гибридизации с амплифицируемым фрагментом ДНК за счет
5`-экзонуклеазной  активности  Taq-полимеразы,  разрушающей зонд после
его   гибридизации   с   амплифицируемой   последовательностью.   Рост
регистрируемого  флуоресцентного  свечения  происходит пропорционально
нарастанию  числа  ампликонов. Это позволяет регистрировать накопление
продуктов  амплификации  в  реальном  времени,  а  сравнение  кинетики
флуоресценции  ДНК-стандартов  и  исследуемого  образца  -  определять
относительную концентрацию ДНК в образце.
     4.6.   Зонды   синтезируют  на  автоматическом  олигонуклеотидном
синтезаторе  типа  ASM102U  фосфитамидным  методом  в  режиме  DMT-on,
используя  фосфорамидиты  и полимерный носитель типа Glen Reseach. Для
введения на 3`-конец зонда метки диметиламинофенилазобензойной кислоты
(DABCYL)  в  качестве гасителя флуоресценции используют фазу 3`-Dabcyl
CPG  (типа  Glen  Reseach)  в  стандартном режиме синтеза. Введение на
5`-конец  зонда  флуорофора  -  донора  флуоресценции  -  осуществляют
автоматическим           синтезом,          при          использовании
6-карбоксифлуоресцеин-амидита  (FAM-фосфорамидит).  Первичную  очистку
зондов   осуществляют   на   колонках  типа  Poly-Pac,  с  последующей
дополнительной очисткой в полиакриламидном геле.
     4.7.   Для   ПЦР   в   реальном   времени   используют   ферменты
Taq-полимеразу     Termo-Star,     или    Taq-полимеразу    HotRescue,
инактивированные  антителами, или полимеразу AmpliTaq Gold, обладающие
выраженной 5`-экзонуклеазной активностью.
     4.8.  Для  проведения  ПЦР в реальном времени используют систему,
состоящую  из термоциклера (амплификатора) и флуоресцентного детектора
продуктов ПЦР в реальном времени.
     4.9.  Концентрацию  ДНК  ГММ в образце определяют путем сравнения
кинетики   флуоресценции   ДНК-стандартов   в   диапазоне   разведений
контрольных   препаратов   (10-кратных   разведений   контрольной  ДНК
известной концентрации) и исследуемого образца.
     4.10.   Амплификацию   проводят   по  двухступенчатой  программе,
объединяющей   стадии   отжига  и  элонгации  в  один  этап;  конечная
концентрация зондов в реакционной смеси - до 200 нМ.
     Реакцию проводят в реакционной смеси объемом 50 мкл, включающей в
себя:  десятикратный реакционный буфер, адаптированный к используемому
типу полимеразы; 250 мкМ каждого из 4 дезоксирибонуклеотидтрифосфатов;
300  нМ  каждого  из праймеров; 200 нМ флуоресцентно-меченого зонда; 5
ед. Taq-полимеразы.
     Амплификацию проводят по программе:
     1) 1 цикл - 10 мин. -95 град.C;
     2) 50 циклов: 20 с - 95 град.C, 1 мин. - 65 град.C.
     4.11.  Для  постановки  ПЦР  в  реальном  времени  в используемом
приборе для амплификации создают специальный протокол в соответствии с
инструкциями  по  пользованию;  после  завершения  создания  протокола
проверяют  наличие  в  списке  режима  компенсации базовой линии ПЦР и
отмечают   используемые   флуоресцентные  красители.  Контрольную  ДНК
используют   в   известных   разведениях   определенной   концентрации
(стандартах); количество повторов стандартов определяют в соответствии
с руководством по эксплуатации прибора.
     4.12.  Детекцию  результатов  ПЦР  в  реальном времени производят
автоматически  в  рамках созданного протокола в графическом и цифровом
виде.  Автоматический  анализ  данных  происходит  следующим  образом:
последние   95%   данных,   собранных   на  каждом  шаге,  фильтруются
средневзвешенным  методом.  Для экспериментов по амплификации выбирают
циклы базовой линии для каждой кривой (образцы) индивидуально с учетом
общего оптимального значения порога. По значениям стандартов вычисляют
стандартную  кривую, на основе которой определяют концентрации ДНК ГММ
в исследуемых пробах.

Фрагмент документа "О НАДЗОРЕ ЗА ОБОРОТОМ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ, СОДЕРЖАЩИХ ГМО".

Предыдущий фрагмент <<< ...  Оглавление

Полный текст документа