кольпоскопия услуга . подробности на сайте.
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ.
ПИТЬЕВАЯ ВОДА И ВОДОСНАБЖЕНИЕ НАСЕЛЕННЫХ МЕСТ.
ОРГАНИЗАЦИЯ ВНУТРЕННЕГО КОНТРОЛЯ КАЧЕСТВА САНИТАРНО -
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ ВОДЫ
МЕТОДИКА
ГЛАВНЫЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ САНИТАРНЫЙ ВРАЧ РФ
6 июля 2001 г.
N МУ 2.1.4.1057-01
(Д)
УТВЕРЖДАЮ
Главный государственный
санитарный врач
Российской Федерации,
Первый заместитель
Министра здравоохранения
Российской Федерации
Г.Г.ОНИЩЕНКО
6 июля 2001 года
Дата введения -
1 октября 2001 года
1. Разработаны Федеральным центром госсанэпиднадзора Минздрава
России (Л.Г. Подунова, Н.С. Кривопалова, Р.С. Сорокина), Аналитическим
центром контроля качества воды ЗАО "Роса" (Г.П. Кашкарова, Е.Н.
Ахапкина, С.Н. Тымчук, А.И. Дородников, А.В. Карташова, В.Е. Ларин),
Федеральным научным центром гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана (Г.М. Трухина),
Центром госсанэпиднадзора в Тульской области (Т.А. Попова).
2. Утверждены Главным государственным санитарным врачом
Российской Федерации - Первым заместителем Министра здравоохранения
Российской Федерации Г.Г. Онищенко 6 июля 2001 г.
3. Введены впервые.
1. ОБЛАСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ
Методические указания "Организация внутреннего контроля качества
санитарно-микробиологических исследований воды" (далее - Методические
указания) предназначены для лабораторий, выполняющих
санитарно-микробиологические исследования воды при обеспечении
государственного санитарно-эпидемиологического и производственного
контроля качества воды: питьевого, хозяйственно-бытового
водоснабжения, водных объектов рекреации, спорта и др.
Настоящие Методические указания являются первым опытом обобщения
научных данных и практических рекомендаций международных и
отечественных документов в этой области, а также результатов их
использования в производственных условиях.
Авторы рассматривают представленный документ как один из этапов
совершенствования организации внутреннего контроля в отношении
качества микробиологических исследований.
Методические указания представляют собой свод отдельных методик и
процедур контроля качества, выполняемых на различных этапах
микробиологических исследований, и направлены на их унификацию в целях
получения надежных и сопоставимых результатов анализа.
Данные Методические указания являются обязательными для
выполнения лабораториями, аккредитованными (аттестованными) на
проведение санитарно-микробиологических исследований воды. Руководство
по качеству аккредитованной испытательной лаборатории должно включать
или иметь ссылки на процедуры, описанные в Методических указаниях.
Документальное представление результатов выполнения методик и
процедур, содержащихся в Методических указаниях, является неотъемлемой
частью при подтверждении технической компетенции лабораторий,
аккредитуемых в области микробиологических исследований воды.
2. НОРМАТИВНЫЕ ССЫЛКИ
1. ГОСТ 18963-73 "Вода питьевая. Методы санитарно -
бактериологического анализа".
2. ГОСТ 26670-91 "Продукты пищевые. Методы культивирования
микроорганизмов".
3. ГОСТ Р ISO/МЭК 17025-2000 "Общие требования к компетентности
испытательных и калибровочных лабораторий".
4. ГОСТ Р 51446-99 (ISO 7218-96) "Микробиология. Продукты
пищевые. Общие правила микробиологических исследований".
5. XI Государственная фармакопея СССР. М., 1998.
6. Инструкции по микробиологическому контролю производства на
предприятиях молочной промышленности. М., 1987.
7. Методические рекомендации к контролю питательных сред по
биологическим показателям. МЗ СССР. М., 1980.
8. Методические рекомендации по контролю стерилизации с
использованием индикаторов стерилизации НПФ "Винар", N 11-8/03-54 от
11.06.93. МЗ РФ.
9. МУ 2.1.4.682-97 Методические указания по внедрению и
применению санитарных правил и норм СанПиН 2.1.4.559-96 "Питьевая
вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем
питьевого водоснабжения. Контроль качества".
10. МУК 4.2.1018-01 "Санитарно-микробиологический анализ питьевой
воды".
11. МУК 4.2.577-96 "Методы микробиологического контроля продуктов
детского питания и лечебного, их компонентов".
12. МУК 4.2.734-99 "Микробиологический мониторинг
производственной среды".
13. ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий
медицинского назначения. Методы, средства и режимы". МЗ СССР, 1985.
14. Приказ N 720 Минздрава СССР от 31 июля 1978 г., п. 4
"Мероприятия, обеспечивающие асептические условия при посевах".
15. Приказ Минздрава РФ от 07.02.00 N 45 "О системе мер по
повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях
здравоохранения Российской Федерации".
16. Руководство Министерства здравоохранения Российской Федерации
Р 3.1.683-98 "Использование ультрафиолетового излучения для
обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях". М., 1998.
17. Руководство Р 2.2.755-99 "Гигиенические критерии оценки и
классификации условий труда по показателям вредности и опасности
факторов производственной среды, тяжести и напряженности трудового
процесса".
18. Сборник инструкций по общим методам контроля стерильности,
физико-химических свойств, пирогенности, на отсутствие контаминирующих
агентов и токсичности медицинских иммунобиологических препаратов. Утв.
Приказом МЗ СССР N 31 от 13.01.83.
19. Система аккредитации испытательных лабораторий (центров)
государственной санитарно-эпидемиологической службы Российской
Федерации. М., 1997.
20. СП 1.2.731-99 "Безопасность работы с микроорганизмами III -
IV групп патогенности и гельминтами". М., 1999.
21. СП 1.2.036-95 "Порядок учета, хранения, передачи и
транспортирования микроорганизмов I - IV групп патогенности". М.,
1996.
22. ФС 42-3377-97 "Питательный агар для культивирования
микроорганизмов сухой (ГРМ-агар)".
23. ФС 42-3378-97 "Питательный бульон для культивирования
микроорганизмов сухой (ГРМ-бульон)".
24. ФС 42-3504-97 "Питательная среда для выделения энтеробактерий
сухая (агар Эндо)".
25. ФС 42-3588-98 "Питательная среда для выделения сальмонелл
сухая (висмут-сульфит агар)".
Использованные документы международного уровня указаны в разделе
"Библиография".
3. ТЕРМИНЫ И ОПРЕДЕЛЕНИЯ
1. Бокс (боксированное помещение) - изолированное помещение с
тамбуром (предбоксником).
2. Бокс биологической безопасности (ламинарное укрытие,
ламинарный шкаф) - конструкция, используемая для физической изоляции
(удержания и контролируемого удаления из рабочей зоны) микроорганизмов
с целью предотвращения возможности заражения персонала и контаминации
воздуха рабочей зоны и окружающей среды.
3. Запас рабочей культуры - культура эталонного штамма в условиях
временного хранения (полужидкий агар, 4 - 8 ЬC).
4. Запас эталонной культуры - культура эталонного штамма в
условиях длительного хранения (-70 ЬC, жидкий азот).
5. Культура для целевого использования - культура эталонного
штамма, прошедшая не более 2 пассажей после высева со среды временного
хранения (из запасов рабочей культуры), предназначенная для
использования в анализе.
6. Лиофилизированная культура - лиофильно высушенная культура
эталонного штамма.
7. Патогенные биологические агенты (ПБА) - патогенные для
человека микроорганизмы (бактерии, вирусы, хламидии, риккетсии,
простейшие, грибы, микоплазмы), генно-инженерно-модифицированные
микроорганизмы, яды биологического происхождения (токсины), гельминты,
а также материал, подозрительный на содержание перечисленных агентов
(включая кровь, другие биологические жидкости и объекты окружающей
среды).
8. Посевная - рабочее помещение, предназначенное для выполнение
первого этапа санитарно-микробиологического исследования воды:
концентрирования, разведения и/или посева в питательные среды.
9. Посевная доза - объем конкретного разведения, содержащий
необходимое для посева количество жизнеспособных клеток тестового
микроорганизма.
10. Разбавитель - жидкость определенного состава, служащая для
приготовления серийных разведений исследуемой воды или модельных
бактериальных культур.
11. Субкультура - культура бактерий, полученная путем пассажа
через полноценные питательные среды.
4. ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ ОРГАНИЗАЦИИ ВНУТРЕННЕГО КОНТРОЛЯ
КАЧЕСТВА САНИТАРНО-МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО
ИССЛЕДОВАНИЯ ВОДЫ
Ведущим аспектом деятельности современной лаборатории является
разработка Системы качества и обеспечение ее функционирования.
Система качества - это совокупность организационной структуры,
методик, процессов и ресурсов, необходимых для осуществления общего
руководства качеством (ISO 8401:1994-04-01).
Система качества охватывает широкий спектр позиций, начиная от
нормативно-методической документации, всесторонне регламентирующей
деятельность лаборатории, ее планировки и технического оснащения,
квалификации, численности и расстановки кадров до организации
внутреннего контроля качества выполняемых анализов.
Согласно МУ 2.1.4.682-97 по внедрению и применению СанПиН
2.1.4.559-96 внутрилабораторный (внутренний) контроль качества
является обязательным звеном в обеспечении качества исследований воды.
Внутренний контроль качества микробиологических исследований -
это комплекс выполняемых лабораторией мероприятий и процедур,
направленных на обеспечение и контроль стабильности требуемых условий
развития искомого микроорганизма, а также предупреждение
неблагоприятного воздействия факторов, возникающих в процессе
подготовки, выполнения и оценки результатов анализа, способных
повлиять на достоверность результата.
Особенностью санитарно-микробиологических исследований воды
является необходимость количественной оценки полученного результата.
Специфика объекта микробиологических исследований, живого
микроорганизма, обладающего индивидуальными (родовыми, видовыми,
штаммовыми) свойствами и особенностями жизнедеятельности в условиях
водной среды, создает не зависящие от исследователя проблемы в оценке
точности количественного результата и обусловливает погрешность
микробиологических методов, достигающую сотен процентов.
К наиболее значимым объективным факторам, влияющим на результат
анализа, относятся следующие:
- неравномерность распределения микроорганизмов, обусловливающая
разброс данных при анализе двух одинаковых объемов одной пробы воды;
- способность адсорбироваться на взвешенных веществах с
образованием трудноразделимых в процессе взбалтывания комплексов,
которые при посевах могут регистрироваться как один микроорганизм;
- влияние сопутствующих микробов-антагонистов, тормозящих
развитие искомых микроорганизмов при их наличии в анализируемой пробе
воды;
- возможное присутствие в исследуемой воде посторонних химических
веществ либо образование их соединений с компонентами питательной
среды, которые могут угнетать (стимулировать) рост исследуемых
микроорганизмов, а также влиять на изменение видовых биохимических
идентификационных признаков;
- нахождение микроорганизма в "стрессовом" состоянии под
воздействием неблагоприятных условий водной среды, в результате
которого затормаживается его способность к развитию.
Исходя из этого основной задачей микробиологических исследований
является создание оптимальных условий для развития выделяемого
микроорганизма в целях получения надежных, сопоставимых количественных
результатов.
Организация внутреннего контроля качества на всех этапах
выполнения микробиологического анализа воды является основой получения
качественного результата.
Основные направления организации внутреннего контроля качества:
1. Контроль за соблюдением требований к условиям проведения
анализа (лабораторные помещения, воздушная среда, температурные режимы
инкубации и хранения, режимы дезинфекции и стерилизации и т.д.).
2. Выполнение регламентированных процедур ведения тестовых
культур.
3. Контроль качества питательных сред.
4. Контроль качества мембранных фильтров.
5. Контроль качества дистиллированной воды.
6. Оценка достоверности качественного результата путем
использования заведомо положительных и отрицательных контролей.
7. Оценка доверительных границ полученного количественного
результата.
8. Систематический анализ результатов контрольных процедур в
целях совершенствования руководства по качеству.
Структура организации внутреннего контроля качества,
периодичность и частота выполняемых процедур представлены в Прилож. 1,
2.
Описания процедур контроля соблюдения требований к условиям
проведения анализа, ведения эталонных бактериальных культур, контроля
качества питательных сред и мембранных фильтров, постановки
положительных и отрицательных контролей и др. представлены в тексте
Методических указаний и иллюстрированы в Приложениях.
Документальное оформление результатов проведенных контрольных
процедур осуществляется в произвольной форме, удобной исполнителю и
наглядной для других специалистов, привлекаемых к участию в различных
комиссиях по проверке работы лаборатории (по аттестации, аккредитации
и др.). При этом могут быть использованы журнальные формы учета или
формы отдельных контрольных листов, которые впоследствии брошюруются
за определенный период времени (месяц, квартал, год) в зависимости от
кратности и вида контроля.
Регистрация и хранение контрольных результатов могут
осуществляться на электронных носителях.
Приведенные в Приложении к Методическим указаниям некоторые
учетные формы носят информационный характер и даны в качестве
возможного варианта учета результатов. Исключение составляют Прилож. 4
и 8.1, в которых приведены формы учета, утв. Минздравом России.
В информационном Прилож. 11 представлен Перечень современного
оборудования, применение которого будет способствовать повышению
качества выполняемых санитарно-микробиологических исследований воды и
надежности получаемых результатов.
Обязательным разделом внутреннего контроля качества является
проведение периодического, но не реже 1 раза в год, анализа
результатов выполненных контрольных процедур, с учетом которого
осуществляется корректировка руководства по качеству испытательной
лаборатории.
Обеспечение качества выполняемых исследований возможно только при
наличии квалифицированного персонала. К работе по выполнению
санитарно-микробиологических анализов воды допускаются специалисты с
высшим и средним специальным медицинским / биологическим
(микробиологическим) образованием, проходящие не реже 1 раза в пять
лет курс повышения квалификации в объеме, определенном Минздравом
России для бактериологов, с выдачей удостоверения установленного
образца.
Требования к набору помещений и их размещению, организации и
безопасности работ микробиологических лабораторий с патогенными
биологическими агентами изложены в санитарных правилах "Безопасность
работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами",
СП 1.2.731-99.
Требования к процедурам выполнения исследований и
метрологическому обеспечению оборудования представлены в
соответствующих нормативных документах и не являются предметом
рассмотрения данных Методических указаний.
Вопрос оценки достоверности количественных результатов
микробиологических исследований воды на сегодняшний день в России
остается не решенным. Действующий ГОСТ 27384-87, представляющий нормы
погрешностей для бактериологических исследований воды, не обеспечивает
возможности оценки получаемых результатов, т.к. входит в противоречие
с реальными методиками анализа.
В случае возникновения проблем сопоставимости и достоверности
результатов санитарно-микробиологических исследований воды
ориентировочную оценку можно получить обращением к табл. ГОСТа
51446-99 "Продукты пищевые. Общие правила микробиологических
исследований", разработанного на основе международного документа ИСО
7218:96.
5. КОНТРОЛЬ ТЕМПЕРАТУРНЫХ РЕЖИМОВ ИНКУБАЦИИ
И ХРАНЕНИЯ
5.1. Процедура контроля температуры в термостатах
Контроль температуры в термостатах проводят ежедневно перед
началом работы.
Для контроля используют поверенные термометры.
Цена деления термометра не должна превышать половины величины
допустимого отклонения температуры инкубации, определенного
нормативно-методической документацией. Например: для температуры 37 ЬC
допустимое отклонение температуры составляет +/- 1 ЬC. Для контроля
температуры в термостате, поддерживающем данную температуру,
необходимо использовать термометры с ценой деления не более 0,5 ЬC.
Соответственно для температуры 44 ЬC при допустимом отклонении
температуры +/- 0,5 ЬC цена деления контрольного термометра не должна
превышать 0,25 ЬC.
Подготовительный этап
Для устранения искажения показаний термометра из-за быстрого
изменения температуры в термостате при открывании дверцы термометр
помещают в пробирку с глицерином либо с расплавленным парафином. После
застывания парафина подготовленный термометр можно размещать в
горизонтальном положении.
Методика контроля
Термометр размещают в центре камеры. При выявлении в процессе
аттестации термостата экстремальных точек термометры размещают в
экстремальных точках.
Ежедневно перед началом работы снимают показания контрольного
термометра, результаты измерений заносят в журнал (контрольный лист) и
заверяют подписью исполнителя (Прилож. 3).
В журнале для каждого термостата должно быть отмечено допустимое
отклонение температуры с учетом требований методов, для исполнения
которых используется конкретный термостат.
В случае превышения допустимых отклонений температуры сотрудник,
проводящий регистрацию, должен немедленно сообщить об этом
руководителю подразделения для принятия мер.
5.2. Процедура контроля температуры в холодильниках
Контроль температуры в холодильниках проводят один раз в неделю.
Температура в холодильнике должна быть в пределах (4 - 8) ЬC. Для
контроля используют поверенные термометры, подготовленные как указано
в п. 5.1.
Методика контроля
Термометр помещают в центр камеры холодильника.
Один раз в неделю перед началом работы снимают показания
контрольных термометров, результаты измерений заносят в журнал
(контрольный лист) и заверяют подписью исполнителя (Прилож. 3).
В случае превышения допустимых отклонений температуры сотрудник,
проводящий регистрацию, должен поставить в известность руководителя
подразделения и провести регулировку для компенсации выявленных
отклонений. Регулировку проводят переводом регулятора температуры
холодильника в нужное положение. После приведения температуры до
уровней допустимых значений двукратно, через 4 часа и на следующий
день, проводят регистрацию температуры.
После приведения к норме режима работы холодильника переходят к
обычной схеме контроля температуры.
6. КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ И ДЕЗИНФЕКЦИИ
6.1. Процедура контроля режимов паровой
и суховоздушной стерилизации
Для контроля режимов стерилизации необходимо использовать три
вида контроля.
----------------------------------------------------------------------
| Вид контроля | Кратность контроля |
|-----------------------------|--------------------------------------|
| Химический | каждый цикл стерилизации |
|-----------------------------|--------------------------------------|
| Термический | 1 раз в 2 недели |
|-----------------------------|--------------------------------------|
| Биологический | 2 раза в год |
----------------------------------------------------------------------
Термический и химический контроль режима стерилизации проводится
оператором парового стерилизатора, прошедшим курс специальной
подготовки по безопасной эксплуатации автоклавов.
Биологический контроль осуществляется бактериологом лаборатории,
проводящей санитарно-бактериологические исследования воды, или
дезинфекционными станциями по заказу лаборатории.
Обо всех случаях неудовлетворительного прохождения какого-либо из
видов контроля стерилизации ответственный исполнитель информирует
руководителя подразделения.
При неудовлетворительном прохождении контроля использование всей
партии материалов запрещается. Материал требует повторной обработки.
До выяснения причин неудовлетворительной работы стерилизатор не
используется.
Причину неудовлетворительной работы стерилизатора устанавливают
представители "Медтехники" или технических служб предприятия. После
устранения причины процедуру контроля работы стерилизатора повторяют.
6.1.1. Химический тестовый контроль
Химический контроль проводят при каждом рабочем цикле. Для
контроля используют бумажные индикаторы стерилизации (НПО "Винар") или
тестовые химические вещества, рекомендованные в прилож. 7.6 санитарных
правил 1.2.731-99.
Методика контроля паровой стерилизации
В контрольных точках рабочей камеры укладывают герметично
запаянные ампулы с химическим тестовым веществом или индикаторные
полоски ИС длиной 2 - 3 см, которые прикрепляют к стерилизационным
коробкам или стерилизуемым изделиям.
Число контрольных точек зависит от емкости камеры.
------------------------------------------------------------------
| Емкость камеры | Число контрольных точек |
| парового стерилизатора (л) | в стерилизационной камере |
|------------------------------|---------------------------------|
|100 | 5 |
|------------------------------|---------------------------------|
|100 - 750 | 11 |
|------------------------------|---------------------------------|
|Свыше 750 | 13 |
------------------------------------------------------------------
Для стерилизатора объемом до 100 л точки 1 и 2 находятся: для
горизонтального автоклава 1-я - у загрузочной двери, 2-я - у
противоположной стенки, для вертикального автоклава - в верхней и
нижней части камеры, соответственно. В точках 1 и 2 тесты располагают
вне стерилизуемых изделий. В остальных точках тесты располагают в
центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок.
Для стерилизаторов больших объемов тесты располагают согласно
схеме, приводимой в инструкции по использованию индикаторов
стерилизации.
Методика контроля суховоздушной стерилизации
В контрольных точках рабочей камеры укладывают герметично
запаянные ампулы с химическим тестовым веществом или индикаторные
полоски ИС длиной 2 - 3 см, которые прикрепляют к упаковкам или
стерилизуемым изделиям.
Число контрольных точек зависит от емкости камеры.
------------------------------------------------------------------
| Емкость камеры | Число контрольных точек |
| воздушного стерилизатора (л) | в стерилизационной камере |
|-------------------------------|--------------------------------|
|До 80 | 5 |
|-------------------------------|--------------------------------|
|Свыше 80 однокамерные | 15 |
|-------------------------------|--------------------------------|
|Свыше 80 двухкамерные | 30 |
------------------------------------------------------------------
В случае 5 точек - точка 1 располагается в центре камеры, а точки
2, 3, 4 и 5 располагаются в нижней части камеры по углам. Точки 2 и 5
находятся перед загрузочной дверью справа и слева (соответственно), а
точки 3 и 4 в глубине камеры у задней стенки также справа и слева.
В случае 15 точек - точки 1, 2 и 3 располагаются в центре камеры
на трех уровнях (полках) сверху вниз, соответственно, а точки 4 - 15
по углам также на трех уровнях (точки 4 - 7 - низ; точки 8 - 11 -
середина; точки 12 - 15 - верх). Угловые точки нумеруются против
часовой стрелки, начиная с правого ближнего угла.
В случае 30 точек - расположение как для 15 точек повторяется для
каждой камеры.
Каждая контрольная точка должна быть расположена на расстоянии не
ближе 5 см от стенок камеры.
Регистрация результатов
По окончании цикла стерилизации ИС (ампулы с химическим тестовым
веществом) извлекают из контрольных точек и сравнивают с эталоном.
Цвет индикатора стерилизации светлее эталона или нерасплавленный
химический тест в пробирке в какой-либо точке указывают на
неэффективную стерилизацию. Результаты контроля заносят (вклеивают ИС)
в журнал по регистрации режимов стерилизации и заверяют подписью
сотрудника, осуществляющего контроль (Прилож. 4). Один раз в неделю
результаты просматриваются и заверяются ответственным бактериологом.
6.1.2. Термический контроль
Термический контроль проводят 2 раза в месяц. Для контроля
используют поверенный максимальный термометр с ценой деления не более
1 град. C и диапазоном измерений, превышающим контролируемую
температуру. Термометр размещают в середине стерилизационной камеры.
После окончания цикла стерилизации и остывания термометра до комнатной
температуры снимают показания. Для определения истинного значения
максимальной температуры цикла стерилизации к снятому с термометра
показанию прибавляют соответствующую поправку, указанную в паспорте на
данный термометр.
Результаты заносят в журнал по регистрации режимов стерилизации и
заверяют подписями исполнителя и ответственного бактериолога (Прилож.
4).
6.1.3. Биологический контроль
Биологический контроль осуществляется 2 раза в год. При
выполнении биологического контроля используют биотесты, в т.ч.
коммерческие, предназначенные для конкретного вида паровой или
суховоздушной стерилизации, разрешенные к применению Минздравом РФ.
Методика контроля (на примере использования
коммерческого набора Испытательного лабораторного
центра Московского городского центра дезинфекции)
Процедуру контроля осуществляют в соответствии с паспортом
биотеста. Пронумерованные пакеты с биотестами размещают в контрольных
точках стерилизатора. Количество контрольных точек и правила
размещения тестов указаны в п. 6.1.1. После завершения процесса
стерилизации в пробирки с биотестами асептически вносят 0,5 мл цветной
питательной среды, начиная со стерильной пробирки для контроля
питательной среды и заканчивая контрольным тестом, не подвергавшимся
стерилизации (контроль культуры). Далее осуществляют инкубацию
пробирок согласно паспорту на набор.
После термостатирования проводят учет изменения цвета питательной
среды. В отрицательном контроле (стерильная пробирка) цвет среды не
должен измениться. В пробирке с контролем культуры цвет среды должен
измениться на цвет, указанный в паспорте, что свидетельствует о
наличии жизнеспособных спор.
Работа парового стерилизатора считается удовлетворительной, если
цвет питательной среды во всех биотестах, подвергавшихся стерилизации,
остался неизменным. Если цвет изменился хотя бы в одном тесте,
стерилизация признается неэффективной.
Результат заносят в журнал по регистрации режимов стерилизации и
заверяют подписью исполнителя (Прилож. 4).
Раздел составлен на основе:
СП 1.2.731-99 "Безопасность работы с микроорганизмами III - IV
групп патогенности и гельминтами";
Методических рекомендаций по контролю стерилизации с
использованием индикаторов стерилизации НПФ "Винар" N 11-8/03-54 от
11.06.93 Министерства здравоохранения Российской Федерации.
6.2. Процедура контроля микробной
обсемененности воздуха
В производственных лабораториях бактериологические исследования
воздуха на обсемененность предусматривают определение общего
содержания микроорганизмов в 1 куб. м воздуха.
Контроль воздуха на микробную обсемененность проводят в посевных
комнатах, боксах или в ламинарных укрытиях перед началом проведения
работ.
Контроль выполняет ответственный исполнитель.
Подготовительный этап
Для контроля используют плотную полноценную неселективную среду
(питательный агар, ГРМ-агар и др.) проверенной ранее серии. Проверка
среды осуществляется, как указано в разделе 11.
Питательный агар разливают в чашки Петри диаметром 90 - 100 мм
слоем не менее 2 мм. Для контроля стерильности среды одну чашку из
приготовленной и разлитой партии среды инкубируют при температуре 37
ЬC в течение 24 часов. Учитывают наличие (отсутствие) пророста среды.
При обнаружении роста микроорганизмов среду выбраковывают.
Методика контроля
Контроль воздуха на обсеменность проводят седиментационным или
аспирационным методом.
Седиментационный метод
В двух точках посевной комнаты, бокса и (или) ламинарного шкафа
ставят открытые чашки Петри с питательным агаром на 15 мин. После
экспозиции чашки закрывают, переворачивают и помещают в термостат.
Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) ЬC в течение (24 +/- 2)
часов. После инкубации проводят учет количества выросших колоний
микроорганизмов.
Аспирационный метод
Отбор проб воздуха проводят с помощью пробоотборных устройств для
бактериологического анализа, зарегистрированных в Госстандарте
Российской Федерации. Отбор пробы воздуха в количестве 100 л проводят
согласно инструкции к пробоотборнику. После отбора пробы снимают чашку
Петри и термостатируют при температуре (37 +/- 1) ЬC в течение (24 +/-
2) часов. После инкубации проводят учет количества выросших колоний
микроорганизмов.
Использование аспирационного метода не допускается для контроля
воздуха укрытий с ламинарным потоком.
Результат заносят в журнал регистрации микробной обсемененности
воздуха и заверяют подписью исполнителя (Прилож. 5).
Допускается пророст не более 3 колоний на чашке при исследовании
седиментационным методом и не выше 500 КОЕ/куб. м при использовании
аспирационного метода. При превышении указанных уровней общего
содержания микроорганизмов немедленно извещают руководителя
подразделения. Работы в боксах приостанавливают. Проводят внеплановую
генеральную уборку бокса с обработкой всех поверхностей с
использованием дезинфицирующих средств и обеззараживанием воздуха
ультрафиолетовым облучением. После окончания мероприятий контроль
микробной обсемененности воздуха повторяют. При повторном получении
неудовлетворительных результатов производят оценку эффективности
применения ультрафиолетового бактерицидного излучения для
обеззараживания воздуха, как указано в разделе 6.4.
Лаборатории центров госсанэпиднадзора для контроля микробной
обсемененности воздуха руководствуются соответствующими Приказами
Минздрава (N 720 и др.).
Раздел составлен на основе: МУК 4.2.734-99 "Микробиологический
мониторинг производственной
среды"; Приказа МЗ СССР N 720 от 31.07.78 "Об улучшении медицинской
помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении
мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией".
6.3. Процедура исследования микробной
обсемененности поверхностей
В производственных лабораториях бактериологическое исследование
микробной обсемененности поверхностей помещений и оборудования
проводится с целью проверки эффективности их дезинфекции и направлено
на обнаружение общих и термотолерантных колиформных бактерий.
Исследование проводят перед работой методом смыва не реже одного
раза в месяц. Смывы проводят с поверхности рабочих столов на каждом
рабочем месте, с дверных ручек, наружных деталей приборов, со стен
бокса.
Подготовительный этап
Для контроля используют:
- пробирки с 5 мл стерильной 1%-ной пептонной воды, в пробки
которых вмонтированы стерильные ватные тампоны на палочках. Тампоны не
должны смачиваться питательной средой;
- среду Эндо проверенной ранее серии (раздел 11).
1 %-ную пептонную воду предварительно проверяют на стерильность.
Для этого 2 пробирки от приготовленной партии среды инкубируют при
температуре 37 ЬC в течение 24 часов. Учитывают наличие (отсутствие)
пророста среды.
В зависимости от применяемого дезинфицирующего агента в качестве
нейтрализатора используют стерильные растворы следующих химических
веществ:
- тиосульфат натрия (0,5%-ный раствор) - при использовании для
дезинфекции хлорсодержащих, перекисных, йодсодержащих препаратов.
Препарат может быть добавлен в 1%-ный раствор пептонной воды;
- сульфонол с молоком (на 1 л раствора используют 200 г
сульфонола, 100 мл обезжиренного молока и 700 мл дистиллированной
воды) - при использовании четвертичных аммониевых соединений;
- мыло банное (0,5%-ный раствор) - при использовании препаратов
на основе анионных поверхностно активных веществ, гибитана;
- водопроводная вода - при использовании препаратов на основе
фенола, глютарового альдегида;
- аммиак (0,5%-ный раствор) - при использовании формальдегида или
препаратов на его основе.
Методика контроля
Стерильный тампон, вмонтированный в пробку пробирки, погружают в
1%-ную пептонную воду. Смоченным тампоном тщательно протирают
исследуемую поверхность. При контроле мелких предметов смывы проводят
с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой
поверхностью смывы проводят с площади не менее 100 кв. см.
После взятия смыва тампон помещают на 10 - 15 мин. в пробирку с
раствором нейтрализатора, затем переносят в пробирку с питательной
средой, погрузив тампон в пептонную воду.
Контрольные смывы инкубируют при температуре (37 +/- 1) ЬC в
течение 18 - 24 часов.
После инкубации проводят высев из 1%-ной пептонной воды на среду
Эндо.
Посевы на среде Эндо и незасеянную чашку среды этой же партии
(отрицательный контроль) инкубируют при температуре (37 +/- 1) ЬC в
течение 18 - 24 часов.
При отсутствии роста на контрольной чашке и наличии роста в
посевах смывов дальнейшее исследование проводят согласно МУК по
санитарно-микробиологическому анализу воды.
Результат заносят в журнал по регистрации микробной
обсемененности поверхностей и заверяют подписью исполнителя.
Обнаружение микроорганизмов в смывах с исследуемых поверхностей
свидетельствует об их неадекватной дезинфекции. В этом случае извещают
руководителя подразделения и выясняют возможные причины неэффективной
дезобработки поверхностей.
Лаборатории центров госсанэпиднадзора для контроля микробной
обсемененности поверхностей руководствуются соответствующими Приказами
Минздрава (N 720 и др.), согласно которым предусматривается выявление
стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечной палочки и,
строго по показаниям, аэромонад.
Раздел составлен на основе:
МУК 4.2.734-99 "Микробиологический мониторинг производственной
среды";
Руководства Минздрава России Р 3.1.683-98 "Использование
ультрафиолетового излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей
в помещениях";
Приказа МЗ СССР N 720 от 31.07.78 "Об улучшении медицинской
помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении
мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией".
6.4. Оценка эффективности ультрафиолетового
бактерицидного излучения
Качество обеззараживания воздуха ультрафиолетовым облучением
зависит от мощности бактерицидного излучения. Мощность бактерицидного
излучения определяется количеством облучателей и эффективностью их
функционирования.
В связи с тем, что количество облучателей определяют при
организации лаборатории согласно требованиям, предъявляемым к
помещениям данного назначения, методика расчета количества установок
для ультрафиолетового облучения в настоящем документе не
рассматривается. Правильность расчета можно проверить по паспорту на
используемый бактерицидный облучатель (УФ-лампы) или согласно
Руководству МЗ РФ Р 3.1.683-98 "Использование ультрафиолетового
излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях".
В процессе работы мощность потока бактерицидного излучения лампы
снижается. В связи с этим при выработке 1/3 ресурса (ресурс лампы
указан в паспорте на лампу) время экспозиции необходимо увеличить в
1,2 раза, а после 2/3 номинального срока службы - в 1,3 раза. При
выработке гарантированного срока службы лампа подлежит замене, даже
если она функционирует.
Для обеспечения качественной работы ультрафиолетовых ламп
необходимо:
- фиксировать дату начала эксплуатации, вести учет времени работы
лампы, вносить коррективы времени экспозиции и осуществлять замену
согласно отработанному ресурсу лампы;
- не менее 1 раза в месяц протирать лампы от пыли.
Эффективность ультрафиолетового облучения помещения оценивают по
результатам микробной обсемененности воздуха.
Применение ультрафиолетового бактерицидного излучения для
обеззараживания воздуха считают эффективным, если уровень микробной
обсемененности после облучения не превышает допустимых пределов -
пророст не более 3 колоний на чашке при использовании
седиментационного метода и не выше 500 КОЕ/куб. м при использовании
аспирационного метода
В случаях пророста на чашках более 3 колоний или обсемененности
воздуха > 500 КОЕ/куб. м выполняют внеплановую генеральную уборку
бокса с обработкой всех поверхностей с использованием дезинфицирующих
средств и обеззараживанием воздуха ультрафиолетовым облучением.
После окончания мероприятий контроль микробной обсемененности
воздуха повторяют.
Если при повторном определении уровень обсемененности воздуха
снова превышает нормативы, определяют бактерицидную эффективность
облучения.
Бактерицидная эффективность является процентным выражением
степени снижения микробной обсемененности воздуха после
ультрафиолетового облучения.
Методика контроля
Для расчета бактерицидной эффективности производят определение
микробной обсемененности воздуха аспирационным методом, как указано в
п. 6.2, до и после облучения. Бактерицидную эффективность рассчитывают
по формуле:
----------------------------------------------------------------------
| БЭ = ((N - N ) / N ) x 100%, |
| д п д |
----------------------------------------------------------------------
где:
БЭ - бактерицидная эффективность облучения в данном помещении;
N - число микроорганизмов до облучения;
д
N - число микроорганизмов после облучения.
п
Применение ультрафиолетового бактерицидного излучения для
обеззараживания воздуха считают эффективным, если бактерицидная
эффективность составляет не менее 99%.
При получении неудовлетворительных результатов контроля ставят в
известность руководителя лаборатории и принимают меры по выяснению
причин недостаточной эффективности обеззараживания.
Если установленная бактерицидная эффективность ультрафиолетового
облучения в пределах нормы, а микробная обсемененность воздуха
превышает нормативы, необходимо выяснить источник контаминации
воздуха.
Раздел составлен на основе:
Руководства Минздрава России Р 3.1.683-98 "Использование
ультрафиолетового излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей
в помещениях".
6.5. Процедура контроля стерильности
фильтровальных установок
Контроль стерильности фильтровальных установок проводят перед
началом посева методом мембранной фильтрации.
Подготовительный этап
Для контроля используют:
- плотную полноценную неселективную среду (питательный агар,
ГРМ-агар и др.) проверенной ранее серии (раздел 11);
- стерильные мембранные фильтры (нитрат- или ацетат-целлюлозные)
для микробиологических целей с диаметром пор 0,45 мкм проверенной
ранее партии (раздел 12);
- стерильная водопроводная вода;
- спирт-ректификат 96Ь-ный.
Накануне исследования питательный агар проверенной серии
разливают в чашки Петри слоем не менее 2 мм и проверяют на
стерильность. Для этого одну чашку из приготовленной среды инкубируют
при температуре 37 ЬC в течение 24 часов. При наличии роста
микроорганизмов приготовленную среду выбраковывают.
Методика контроля
Фильтровальные воронки устанавливают в гнезда фильтровальных
столиков. Внутренние поверхности воронки фильтровальной установки
смачивают 96Ь-ным спиртом и фламбируют. После сгорания спирта и
остывания воронок одну из воронок снимают. С помощью стерильного
пинцета помещают мембранный фильтр на основание держателя фильтра,
затем снова присоединяют фильтровальную воронку.
При отключенном вакууме воронку заполняют стерильной водой таким
образом, чтобы вода обмыла внутренние стенки воронки. Объем стерильной
воды должен составлять не менее половины максимального объема воронки.
Включают вакуум и отфильтровывают содержимое воронки. Вакуум
отключают, снимают фильтровальную воронку и стерильным пинцетом
переносят мембранный фильтр с основания на чашку со средой. Между
мембранным фильтром и поверхностью агара не должно быть пузырьков
воздуха. Чашки с посевами переворачивают и инкубируют в термостате при
(37 +/- 1) ЬC в течение (24 +/- 2) часов.
Рост микроорганизмов свидетельствует о неэффективной обработке
фильтровальной установки. Результаты заносят в журнал контроля
стерильности фильтровальных установок и визируют подписью сотрудника,
выполнившего контроль (Прилож. 6). Обо всех случаях нестерильности
фильтровальных установок ставят в известность руководителя
подразделения.
6.6. Процедура контроля обсемененности флаконов
для отбора проб
Контролю подвергаются все виды флаконов, используемые для отбора
проб: стеклянные, многоразового использования после стерилизации и
пластиковые одноразового использования, поступающие стерильными от
производителя.
Условия проведения испытаний в значительной мере обусловливают
качество данного вида контроля. В этой связи его неотъемлемой частью
является следующий комплекс мероприятий.
1. Анализ проводят в боксе для разливки сред или в посевных
комнатах (боксах) для посева питьевой воды.
2. Непосредственно перед исследованием проводят дезинфекционную
обработку помещения (мытье бокса). После дезобработки включают
дополнительно бактерицидные лампы на 1,5 - 2 часа.
Спецодежду для проведения анализа (халат, шапочку, четырехслойную
марлевую маску) стерилизуют. Режим стерилизации спецодежды:
автоклавирование при температуре (120 +/- 1) ЬC в течение 45 минут или
при температуре (132 +/- 2) ЬC в течение 20 минут.
Перед входом в бокс сотрудник, проводящий испытания, тщательно
моет руки теплой водой с мылом и щеткой, вытирает стерильным
полотенцем, одевается в стерильный халат, шапочку, маску, надевает
перчатки, обрабатывает их 70%-ным этиловым спиртом.
При наличии ламинарного укрытия исследование выполняют в
спецодежде с использованием стерильных перчаток.
Во время испытаний проводят контроль воздуха на обсемененность в
соответствии с процедурой, описанной в п. 6.2. Результаты контроля
заносят в протокол испытания.
Контроль обсемененности стеклянных флаконов
для отбора проб
Целью проведения данного вида контроля является выборочный
контроль качества подготовки посуды в отношении различных по
устойчивости микроорганизмов, учитываемых при проведении анализа
питьевой воды: контроль на общую обсемененность, контроль на наличие
спор сульфитредуцирующих клостридий.
При проведении контроля режимов суховоздушной стерилизации в
полном объеме (биологический, термический, химический) с рекомендуемой
периодичностью контроль обсемененности стеклянных флаконов для отбора
проб в зависимости от объема стерилизуемых партий проводят не реже 1
раз в квартал.
Для каждого вида анализа отбирают флаконы в количестве 1%, но не
менее 3 от общего количества партии стерилизованной посуды. Партией
флаконов считают все флаконы, прошедшие стерилизацию за один цикл
работы одного стерилизатора.
В случае получения результата, свидетельствующего о
нестерильности хотя бы одного флакона, все партии флаконов, прошедшие
обработку в данном стерилизаторе, бракуют. Забракованные партии
флаконов подлежат повторной стерилизации. Выясняют возможные причины
нарушения стерильности. Проводят комплексную проверку стерилизатора с
одновременным использованием химического, термического (в 5 точках) и
биологического контроля согласно п. 6.1.
Подготовительный этап
Для контроля используют:
- жидкую полноценную неселективную среду (питательный бульон,
ГРМ-бульон и др.) проверенной ранее серии (раздел 11);
- плотную полноценную неселективную среду (питательный агар,
ГРМ-агар и др.) проверенной ранее серии (раздел 11);
- железосульфитный агар, приготовленный согласно МУК 4.2.1018-01,
либо зарубежные аналоги, предназначенные для определения
сульфитредуцирующих клостридий в воде;
- стерильные мембранные фильтры (нитрат- или ацетат-целлюлозные)
для микробиологических целей с диаметром пор 0,45 мкм проверенной
ранее партии (раздел 12);
- стерильные чашки Петри диаметром 90 мм;
- стерильную водопроводную воду;
- спирт-ректификат 96Ь-ный для фламбирования;
- спирт-ректификат 70%-ный для дезинфекции.
Питательный бульон предварительно проверяют на стерильность. Для
этого 2 пробирки от приготовленной партии среды инкубируют при
температуре 37 ЬC в течение 48 часов - учитывают наличие (отсутствие)
пророста среды. При наличии пророста партию бульона выбраковывают.
Контроль стерильности питательного агара и железосульфитного агара
проводят в процессе исследования путем постановки отрицательного
контроля.
Методика контроля
Контроль на общую обсемененность
В исследуемые флаконы вносят питательный бульон в количестве 20%
от объема флакона (например, во флакон 500 мл вносят 100 мл
питательного бульона). Флаконы закрывают стерильными резиновыми
(силиконовыми) пробками.
Переворачиванием или встряхиванием флаконов трехкратно обмывают
всю внутреннюю поверхность флакона, включая пробку. Инкубацию посевов
проводят в этих же флаконах при (37 +/- 1) ЬC в течение (48 +/- 2)
часа. При видимом росте (помутнение бульона) в каком-либо флаконе
результат учитывают как "не стерильно". При сохранении прозрачности
питательного бульона проводят контроль пророста бульона: из каждого
флакона отбирают по 1 мл содержимого, вносят в 2 стерильные чашки
Петри и заливают питательным агаром. Параллельно для контроля
стерильности используемого питательного агара стерильную чашку Петри
заливают тем же питательным агаром (отрицательный контроль). Чашки с
посевами инкубируют при температуре 37 ЬC в течение 48 часов.
Наличие бактериального роста при условии отсутствия роста
микроорганизмов в отрицательном контроле свидетельствует о
нестерильности флакона. Результаты заносятся в протокол исследования.
Контроль на наличие спор сульфитредуцирующих клостридий
В исследуемые флаконы вносят стерильную водопроводную воду в
количестве 20% от объема флакона (например, во флакон 500 мл вносят
100 мл воды). Флаконы закрывают стерильными резиновыми пробками.
Переворачиванием или встряхиванием флаконов трехкратно обмывают
(смачивают) всю внутреннюю поверхность флакона, включая пробку.
Фильтровальную установку фламбируют, после чего производят фильтрацию
100 мл стерильной водопроводной воды (отрицательный контроль), затем
через другой мембранный фильтр без дополнительного обжига установки
фильтруют весь объем смыва с флакона.
Дальнейшие исследования обоих фильтров ("смыва" и "контроля")
выполняют аналогично по схеме анализа на выявление спор
сульфитредуцирующих клостридий по МУК 4.2.1018-01.
Наличие роста колоний сульфитредуцирующих клостридий при
отсутствии роста в отрицательном контроле свидетельствует о
нестерильности флакона. Результаты заносятся в протокол исследования.
Раздел составлен на основе:
МУ 24-92 Министерства медицинской промышленности "Контроль
стерильности материалов первичной упаковки".
7. КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДИСТИЛЛИРОВАННОЙ ВОДЫ
В микробиологических исследованиях воды дистиллированная вода
используется для приготовления питательных сред, различных растворов,
мытья лабораторной посуды, заправки паровых стерилизаторов.
Дистиллированная вода, применяемая в микробиологических
лабораториях, должна соответствовать требованиям ГОСТа 6709-72 и
проходить контроль не реже 1 раза в месяц.
Хранить дистиллированную воду следует в стеклянных или
пластиковых бутылях, желательно с нижним сливом, закрытых крышками или
пробками.
Примечание. Документы Международного комитета по стандартизации
предъявляют более жесткие требования к воде, предназначенной для
приготовления питательных сред. Разный состав воды может обусловливать
отличия по качеству питательных сред, приготовленных в разных
лабораториях или даже в одной и той же лаборатории из обезвоженной
среды одной серии одного производителя, и, как следствие, существенные
различия в результатах анализа.
В качестве оптимального варианта для приготовления питательных
сред, а также реактивов, используемых непосредственно в анализе,
предлагается применение бидистиллированной или деминерализованной
воды.
Стандарт ISO 7218:1996, а также ГОСТ Р 51446-99 качество воды,
предназначенной для приготовления питательных сред, оценивают по
удельному сопротивлению, которое должно быть не менее 300000 Ом/см
(либо по электропроводности - не более 3 МкС/см).
Об этом необходимо помнить при использовании для приготовления
питательных сред дистиллированной воды, полученной с помощью
дистилляторов и контролируемой по ГОСТу 6709-72.
При использовании деминерализованной воды необходимо обращать
внимание на содержание микроорганизмов, которые могут размножаться на
фильтрах и при прохождении через ионообменник попадать в воду. При
высокой контаминации воды микроорганизмами продукты их
жизнедеятельности могут оказывать ингибирующее действие на рост
исследуемых микроорганизмов. Наиболее адекватным методом контроля в
этих случаях является определение общего числа микроорганизмов,
выросших на питательном агаре при температуре 22 ЬC в течение 72
часов.
При приобретении установок деионизированной воды для
микробиологических анализов необходима консультация с производителями
в целях выбора способов обработки, предотвращающих вторичное микробное
загрязнение воды.
Раздел составлен на основе:
ГОСТа 6709-72 "Вода дистиллированная";
ГОСТа 51446-99 (ISO 7218-96) "Микробиология. Продукты пищевые.
Общие правила микробиологических исследований";
ISO 7218:1996 "Микробиология продуктов питания и кормов для
животных. Общие правила микробиологических исследований";
ISO 3696-87 "Вода для аналитических лабораторных исследований.
Спецификация и методы испытания";
ISO 9998:1991 (E) "Качество воды. Методы оценки и контроля
микробиологического подсчета колоний в средах с применением тестов
качества воды".
8. ТРЕБОВАНИЯ К ПОДГОТОВКЕ ЛАБОРАТОРНОЙ ПОСУДЫ
Одним из факторов, оказывающих влияние на результаты проводимых
исследований воды, является недостаточная чистота посуды.
Вся лабораторная посуда, вышедшая после проведения исследования
(чашки, колбы, пробирки со средами), помещается в специальные биксы
или ведра с крышками и обеззараживается автоклавированием при 126 ЬC в
течение 60 мин. или 132 ЬC в течение 20 мин. Категорически запрещается
освобождать использованную посуду от содержимого (питательных сред,
растворов с посевами) до обеззараживания.
В исключительных случаях допускается обеззараживание кипячением в
2%-ном растворе пищевой соды или 0,5%-ном растворе нейтрального
моющего средства в течение 60 мин. с момента закипания. Кипячение
должно происходить в закрытой емкости с полным погружением в раствор.
Отработанные пипетки обеззараживают в высоком сосуде с полным
погружением в дезраствор. Продолжительность обеззараживания зависит от
применяемого дезсредства.
При выборе методов обеззараживания необходимо руководствоваться
санитарными правилами СП 1.2.731-99 "Безопасность работы с
микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами".
Допускаются также к использованию новые дезинфекционные средства,
получившие разрешение Минздрава России на применение. В этих случаях
следует руководствоваться рекомендациями производителя.
Для мытья посуды необходимо применять нейтральные моющие
средства, лучше всего применять жидкое моющее средство "Прогресс".
Допустимо также использовать с этой целью нейтральные синтетические
моющие средства, не содержащие биодобавок (например, "Лотос",
"Кристалл", "Эра").
Схема мытья посуды для исследования воды
Для облегчения процесса мытья посуды после автоклавирования
обеззараженную посуду следует замочить в 1%-ном растворе моющего
средства "Прогресс" в горячей воде на 1 - 2 часа. Всю посуду тщательно
промыть с помощью ершей и щеток. Отполоснуть от моющего средства в
проточной водопроводной воде (8 - 10 раз при использовании моющего
средства "Прогресс" и до 15 раз при использовании других порошков).
Прополоскать в проточной дистиллированной воде 3 - 4 раза. Высушить
при комнатной температуре или в сушильном шкафу при температуре 80 -
100 ЬC.
Перед мытьем обеззараженных пипеток удаляют "ватики", промывают
водопроводной водой под давлением и кипятят в 1%-ном растворе
бикарбоната натрия в течение 45 мин., многократно промывают
водопроводной, затем дистиллированной водой. Высушивают, вставляют
"ватики" и стерилизуют в суховоздушном стерилизаторе в завернутом виде
или пенале.
Обработка новой посуды
Новую посуду, предназначенную для бактериологических
исследований, моют в 0,5%-ном растворе моющего средства, ополаскивают
проточной водопроводной водой и кипятят в течение 15 - 20 мин. в 1 -
2%-ном растворе соляной кислоты, затем ополаскивают дистиллированной
водой.
Проверка качества мытья лабораторной посуды
При обработке и мытье стеклянной лабораторной посуды используются
моющие и дезинфицирующие средства, содержащие вещества, которые могут
влиять на рост микроорганизмов. Контроль на наличие остаточных
количеств моющих средств имеет важное значение.
Контроль чистоты мытья лабораторной посуды осуществляют путем
визуального наблюдения и выборочного проведения тестов.
Стекло вымытой и высушенной посуды должно быть прозрачным, без
подтеков, пятен и посторонних включений. При ополаскивании вымытой
посуды вода стекает равномерно со стенок флаконов, пробирок, по
поверхности чашек и пр.
Качество удаления синтетических моющих и моюще-дезинфицирующих
средств оценивают по величине pH. Для этих целей используют
pH-индикаторную бумагу с шагом измерительного диапазона не более 0,3
ед. Предварительно определяют pH воды, применяемой для ополаскивания
посуды на конечном этапе. Контрольные измерения pH проводят путем
прикладывания pH-индикаторной бумаги к поверхности вымытого мокрого
стекла, прошедшего обработку. Для контроля произвольно выбирают 3 - 10
ед. посуды. Значение pH воды, полученной в результате контроля, должно
соответствовать pH дистиллированной воды, примененной для
ополаскивания.
Наличие остаточных жировых загрязнений может быть определено с
помощью реактива, содержащего Судан III. Для этого внутреннюю
поверхность вымытой и высушенной посуды смачивают 3 - 5 мл красящего
раствора, распределяют его по исследуемой поверхности в течение 10 с,
затем быстро смывают обильной струей воды. На внутренней поверхности
посуды не должно оставаться желтых пятен и подтеков.
Приготовление красящего раствора: в 70 мл нагретого до 60 ЬC
90%-ного этилового спирта растворяют по 0,2 г измельченной краски
Судан III и метилового синего, затем добавляют 10 мл 20 - 25%-ного
раствора аммиака, 20 мл дистиллированной воды и взбалтывают. Раствор
годен в течение 6 месяцев.
Методика проверки качества промывки лабораторной посуды от моющих
средств и подбора режима мытья посуды при использовании нового моющего
средства, рекомендованная ИСО 9998:1991 (E), приведена в Прилож. 12 в
качестве справочной информации.
Подготовка посуды к использованию
Лабораторную посуду (флаконы, пробирки, бутылки, колбы) закрывают
силиконовыми пробками. Поверх пробки (кроме пробирок) надевают
бумажный (из фольги) колпачок. Бумажный колпачок обвязывают вокруг
горлышка ниткой или закрепляют резиновым кольцом.
Чашки Петри, пипетки стерилизуют завернутыми в плотную оберточную
бумагу или в пеналах.
При использовании специальной лабораторной посуды и расходных
материалов (флаконов с завинчивающимися пробками, металлических или
силиконовых колпачков, выдерживающих автоклавирование,
микробиологических пробок многоразового использования и других
материалов) следует руководствоваться рекомендациями производителя.
Стерилизацию лабораторной посуды осуществляют сухим жаром в
сушильном шкафу при 160 ЬC - в течение 2 часов, 180 ЬC - в течение 60
мин. или паром в автоклаве при 1 атм., 121 ЬC - в течение 30 мин. с
последующим подсушиванием в сушильном шкафу при отсутствии вакуумной
сушки в автоклаве.
После стерилизации посуду хранят до использования в закрытом
шкафу или ящиках с крышками не более 10 суток при ненарушенной
упаковке или невскрытом пенале.
Пробирки и другую лабораторную посуду до стерилизации следует
хранить в чистых коробках или ящиках столов, выложенных чистой
фильтровальной бумагой. Сверху подготовленную посуду также следует
прикрыть фильтровальной бумагой от пыли и случайной грязи.
Вымытые предметные стекла вытирают чистой салфеткой и помещают в
склянку с притертой пробкой со смесью Никифорова (смесь этилового
спирта и эфира в соотношении 1:1).
Обработка резиновых пробок
Новые пробки кипятят 30 мин. в 2%-ном растворе бикарбоната
натрия, многократно промывают горячей проточной водопроводной водой
(кипячение и промывание повторяют дважды). Затем пробки кипятят 30
мин. в дистиллированной воде, промывают и высушивают.
Пробки, бывшие в употреблении, после кипячения в 2%-ном растворе
бикарбоната натрия ополаскивают проточной водопроводной водой, кипятят
30 мин. в дистиллированной воде, ополаскивают дистиллированной водой,
высушивают.
Резиновые пробки для флаконов заворачивают в бумагу или фольгу и
стерилизуют автоклавированием.
Раздел составлен на основании:
СП 1.2.731-99 "Безопасность работы с микроорганизмами III - IV
групп патогенности и гельминтами";
МУК 4.2.577-96 "Методы микробиологического контроля продуктов
детского питания и лечебного, их компонентов";
Инструкции по микробиологическому контролю производства на
предприятиях молочной промышленности, 1987;
ОСТа 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского
назначения. Методы, средства и режимы". МЗ, 1985;
Приказа МЗ РФ N 309 "Об утверждении Инструкции по санитарному
режиму аптечных организаций (аптек)";
XI Государственной фармакопей СССР. Вып. 2, 1990.
9. ПРАВИЛА ПРИГОТОВЛЕНИЯ СЕРИЙНЫХ РАЗВЕДЕНИЙ
Разведением для микробиологических исследований служит раствор
или суспензия исследуемого образца, смешанные с девятикратным
количеством жидкости для разведения - разбавителем.
Приготовление разведений необходимо:
- при исследовании загрязненных вод в целях снижения количества
микроорганизмов на единицу объема, для обеспечения возможности
наблюдения за их ростом или подсчетом колоний;
- для постановки исследований, требующих количественного учета
используемых модельных микроорганизмов, например при количественной
оценке качества питательных сред, мембранных фильтров и т.д.
Приемлемое для учета число микроорганизмов составляет:
- для метода подсчета колоний на чашках Петри (90 - 100 мм) - от
15 до 300;
- для учета колоний на фильтре (47 - 50 мм) - от 15 до 100
колоний;
- для учета колоний на фильтре (35 мм) - от 15 до 60 колоний.
Важным моментом в процедуре приготовления разведений является
равномерность распределения внесенных микроорганизмов по объему
разбавителя. Равномерность распределения достигается тщательным
перемешиванием полученной смеси. Достичь более качественных
результатов позволяет использование специальных приборов -
встряхивателей.
В процессе приготовления разведений каждый образец с помощью
прибора тщательно взбалтывают в течение 5 - 10 с. Частоту вращения
подбирают так, чтобы жидкость, которая образует воронку, не доходила
до края пробирки на 2 - 3 см.
Разбавители
В качестве разбавителей при приготовлении разведений
используют:
Пептонно-солевой разбавитель
Пептон 1,0 г
Натрий хлористый 8,5 г
Дистиллированная вода 1000 мл
Физиологический раствор
Натрий хлористый 8,5 г
Дистиллированная вода 1000 мл.
Для приготовления разбавителя указанные компоненты растворяют в
воде, при необходимости с подогреванием. Доводят pH так, чтобы после
стерилизации он был равен 7,0 +/- 0,2 при 25 ЬC. Разливают разбавитель
во флаконы. Стерилизуют при 121 ЬC в течение 20 мин. Помимо
перечисленных выше разбавителей, для приготовления разведений
исследуемой воды допускается применение стерильной водопроводной воды.
Методика выполнения разведений исследуемой воды
Разведения исследуемого образца воды следует готовить
непосредственно перед анализом и использовать для инокуляции не позже
30 мин. с момента приготовления. В стерильные пробирки, количество
которых соответствует выбранной степени разбавления исследуемой воды,
асептически вносят по 9 мл разбавителя. В первую из пробирок,
содержащих 9 мл разбавителя, не касаясь стенок пробирки и поверхности
разбавителя, пипеткой вносят 1 мл хорошо перемешанной пробы воды,
тщательно встряхивают или перемешивают пипетированием.
-1
Приготовленное первое разведение (10 ) содержит в 1 мл суспензии
0,1 мл исходного образца. В следующую (вторую) пробирку, также
содержащую 9 мл разбавителя, не касаясь стенок пробирки и поверхности
разбавителя, новой пипеткой вносят 1 мл хорошо перемешанного первого
разведения исследуемой пробы. Смесь тщательно встряхивают или
-2
перемешивают пипетированием. Второе разведение (10 ) в 1 мл суспензии
содержит 0,01 мл исходного образца.
Процедуру приготовления разведений продолжают по описанной схеме
до получения суспензии с необходимой концентрацией исходного образца.
Методика приготовления суспензий с заданной
концентрацией клеток тестовых микроорганизмов
Приготовление суспензий с заданной концентрацией клеток тестовых
микроорганизмов осуществляют с использованием оптического стандарта
мутности, соответствующего 0,9 - 1 млрд. микробных клеток/мл.
В стерильную стандартную пробирку, прилагаемую к стандарту,
вносят 3 - 4 мл разбавителя. Агаровую культуру тестового
микроорганизма петлей переносят в пробирку и растирают по внутренней
поверхности пробирки, постепенно смешивая с содержащимся в ней
разбавителем.
Возможно приготовление бактериальной взвеси методом смыва
выросшей культуры со скошенного агара 5 мл разбавителя.
Полученную взвесь микроорганизмов интенсивно встряхивают,
добиваясь полного и равномерного распределения клеток. Мутность
полученной взвеси сравнивают с мутностью оптического стандарта,
который также предварительно тщательно встряхивают.
При визуальном несоответствии мутности приготовленной суспензии
стандарту ее доводят либо добавлением агаровой культуры, либо
добавлением разбавителя. После каждого вносимого изменения суспензию
тщательно встряхивают.
При совпадении мутности приготовленной суспензии и мутности
оптического стандарта считается, что концентрация клеток тестовой
культуры в данной суспензии примерно соответствует значению,
9
указанному для данного стандарта (0,9 - 1 x 10 кл/мл).
Для получения суспензии с нужной концентрацией тестового
микроорганизма выполняют серийные разведения полученной стандартной
суспензии описанным выше способом.
Для контроля правильности приготовления суспензии, правильности
выполнения разведений и расчета заражающей дозы проводят контрольный
высев. Выполнение контроля разведений и расчета заражающей дозы
описаны в разделе 11.4.2.1.
Раздел составлен на основе:
ISO 6887-1983 "Общее руководство по приготовлению разведений для
микробиологических исследований".
10. ПРОЦЕДУРА ВЕДЕНИЯ ЭТАЛОННЫХ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КУЛЬТУР
10.1. Общие положения
Ведение эталонных культур обеспечивает максимальное сохранение
типовых свойств штаммов, что достигается соблюдением принципов их
культивирования, контроля и хранения.
Основные принципы ведения эталонных бактериальных культур:
- эталонные штаммы следует получать из официально признанной
коллекции микроорганизмов;
- количество пассажей тестового микроорганизма на питательных
средах с момента его восстановления до момента его целевого
использования должно быть, по возможности, минимальным;
- движение культуры с момента ее восстановления после
лиофилизации до целевого использования должно быть однонаправленным,
т.е. запасы эталонной культуры не должны пополняться за счет (из)
запасов рабочей культуры. Нежелательно пополнять запасы рабочей
культуры путем получения ее субкультур;
- контроль эталонного штамма на соответствие паспортным данным и
отсутствие диссоциации необходимо проводить перед закладкой на
длительное хранение и перед восполнением запасов рабочей культуры;
- штаммы с измененными свойствами для дальнейшей работы не
используют;
- для целевого использования пригодны культуры эталонного штамма,
прошедшие с момента высева со среды для хранения запасов рабочей
культуры не более 2 пассажей.
Данный раздел регламентирует вопросы культивирования, хранения и
контроля эталонных культур, которые должны использоваться для
обеспечения надлежащего качества исследований в практике лабораторий,
выполняющих санитарно-микробиологические исследования воды.
Согласно СП 1.2.036-95 "Порядок учета, хранения, передачи и
транспортирования микроорганизмов I - IV групп патогенности", пункт
3.1.6: "Производственным подразделениям предприятий, контролирующим
готовую продукцию, разрешается иметь только коллекцию типовых культур,
предусмотренных нормативно-технической документацией".
В практике лабораторий, выполняющих санитарно -
микробиологические исследования воды, используются следующие эталонные
культуры микроорганизмов:
1. E.coli M17-02 как положительный контроль биохимических тестов
и отрицательный контроль реактива на оксидазу; для контроля мембранных
фильтров; для контроля качества питательных сред по биологическим
показателям.
2. Pseudomonas aeruginosa или Pseudomonas fluorescens как
положительный контроль реактива на оксидазу.
+
3. E.coli К12 F Str-r для выполнения анализа на колифаги.
4. Фаг MS2 для контроля способности рабочей культуры E. coli
+
К12 F Str-r лизироваться специфическим фагом.
Хранение культур осуществляется в соответствии с п. 3.2.12 СП
1.2.036-95. Лаборатория должна иметь разрешение на работу с
микроорганизмами III - IV групп патогенности.
С учетом различной технической и материальной обеспеченности
лабораторий возможны два варианта ведения эталонных бактериальных
культур:
- без создания запаса эталонной культуры длительного хранения, не
требующий специального оснащения;
- с созданием запаса эталонной культуры длительного хранения с
применением криоконсервации, который следует рассматривать как
оптимальный.
10.2. Ведение эталонных бактериальных
культур без создания запаса эталонной культуры
длительного хранения
Процесс ведения эталонных культур в данном варианте состоит из
следующих блоков:
- восстановление и контроль лиофилизированной культуры;
- создание запаса рабочей культуры; хранение в полужидком агаре
при 4 - 8 ЬC;
- восполнение запаса рабочей культуры;
- подготовка культуры для целевого использования;
- контроль видовых и паспортных свойств.
Хранение запаса рабочей культуры в полужидком агаре при 4 - 8 ЬC
не требует специального оснащения, но порождает необходимость
восполнения запасов рабочей культуры путем получения ее субкультур на
среде хранения каждые 3 месяца.
Дополнительные пассажи через питательные среды могут привести к
диссоциации штамма и потере тестовых свойств. Восполнять запас рабочей
культуры разрешается только 3 раза (конец 3, 6 и 9 месяца) с момента
его создания. Это ограничивает срок использования эталонной культуры,
полученной из 1 ампулы, 1 годом, по истечении которого необходимо
вскрыть новую ампулу с тестовой культурой.
Данный вариант культивирования и хранения эталонных культур
аэробов и факультативных анаэробов отражен на схеме в прилож. 7.1 <*>.
--------------------------------
<*> Не приводится.
10.2.1. Восстановление лиофилизированной
эталонной культуры
Оттянутый конец ампулы с лиофилизированной культурой нагревают
над пламенем горелки. Влажным концом стерильного ватного тампона
прикасаются к нагретой части, в результате чего появляются трещины.
Конец ампулы накрывают трехслойной марлевой салфеткой, смоченной
70Ь-ным этиловым спиртом и хорошо отжатой, и обламывают пинцетом.
После вскрытия ампула остается накрытой той же салфеткой в
течение 1 - 2 мин. Затем салфетку осторожно снимают и вместе с
остатками стекла погружают в дезраствор. В ампулу вносят ~= 0,3 мл
питательного бульона для регидратации. Содержимое ампулы перемешивают,
переносят стерильной пастеровской пипеткой или шприцем в пробирку с
питательным бульоном и инкубируют при 37 ЬC в течение 18 - 24 часов.
Оставшуюся бульонную культуру Е.coli M17-02 используют для оценки
степени диссоциации эталонного штамма.
После инкубации из питательного бульона делают высев петлей на
скошенный питательный агар в две пробирки. При восстановлении штамма
+
E.coli К12 F Str-r посев осуществляется на скошенный питательный агар,
содержащий стрептомицин. Посевы инкубируют при 37 град. C 18 - 24
часа.
Одну пробирку с посевом используют для постановки тестов на
соответствие полученного штамма видовым паспортным свойствам. Второй
посев на скошенном питательном агаре используют для создания запасов
рабочей культуры.
Культура с измененными свойствами в работу не допускается.
10.2.2. Создание запасов рабочей культуры
При удовлетворительном прохождении контрольных тестов культуру со
+
скошенного питательного агара (для Е.coli К12 F Str-r - с питательного
агара со стрептомицином) засевают уколом в столбик с полужидким
агаром. В зависимости от интенсивности работы лаборатории посев
проводят в 4 - 7 пробирок из расчета по 1 - 2 пробирки на 1 месяц
работы и в 1 пробирку для восполнения запасов рабочей культуры через
три месяца на следующий квартал. Посевы инкубируют 18 - 24 часа при 37
град. C. При наличии роста пробирки закрывают резиновыми пробками и
закладывают на хранение при температуре 4 - 8 град. C.
Одну из пробирок с культурой, предназначенной для восполнения
рабочих запасов, маркируют и хранят отдельно. Запасы рабочей культуры
желательно хранить в отдельном холодильнике.
10.2.3. Восполнение запасов рабочей культуры
Восполнение запасов рабочей культуры производится в конце
третьего, шестого и девятого месяца с момента вскрытия ампулы (каждые
3 месяца).
Для восполнения запасов рабочей культуры используется субкультура
на среде хранения, полученная ранее при создании запасов или при
очередном их восполнении. Из пробирки с культурой, предназначенной для
восполнения запасов, производят посев в питательный бульон. Посевы
инкубируют при 37 ЬC в течение 18 - 24 часов. Оставшуюся бульонную
культуру Е.coli M17-02 используют для оценки степени диссоциации.
После инкубации из питательного бульона делают высев петлей в две
пробирки со скошенным питательным агаром. При ведении штамма E.coli
+
К12 F Str-r посев осуществляется на скошенный питательный агар,
содержащий стрептомицин. Посевы инкубируют при 37 град.C 18 - 24 часа.
Один из посевов используют для постановки тестов на соответствие
полученного штамма видовым паспортным свойствам. Второй посев на
скошенном питательном агаре используют для восполнения запасов рабочей
культуры.
При удовлетворительном прохождении контрольных тестов процедура
закладки культуры на хранение осуществляется согласно п. 10.2.2.
Восполнение запасов рабочей культуры проводят только 3 раза. По
истечении года использования необходимо получить новую эталонную
|